您知道免疫親和層析產生背景及技術原理嗎？下面由貞正固相微萃取來介紹一下。

  免疫親和層析產生背景
  殘留檢測的確證方法主要是儀器分析法,如LC-MS、GC-MS或HPLC,這些方法中因殘留組分量很小,檢測方法需要較高靈敏度和準確性。樣品前處理是檢測技術的核心,傳統的樣品凈化技術主要有液—液分配(LLE)、固相萃取(SPE)、基質固相分散(MSPD)、超臨界萃取(SFE)等。但是這些凈化技術通常需要多個凈化步驟,缺乏選擇性,不但費時繁瑣、容易污染、損失樣本且會引起嚴重的本底干擾,降低結果的可靠性。因此建立高效的樣本凈化技術已成為痕量分析的主要問題。近20年,固相提取領域研究的不斷深入,推進了從分析物中選擇性萃取目標產物為目的的新技術發展。
  免疫親和層析(Immunoaffinity Chromatography,IAC)提供了一個有效的方法,從液體材料中進行選擇凈化、化合物濃縮、分類,然后從固相支持物中提取純化樣本。20世紀60年代末溴化氰活化瓊脂糖載體開始,IAC成為免疫化學中有效分離手段之一。

  Van等首次應用IAC技術凈化了豬肉中的氯霉素隨后1989年又在此技術基礎上測定了蛋、牛奶中的氯霉素。其現在已成為醫藥、獸藥、食品檢測中,前處理方法應用的重要手段。
  這項技術在獸藥殘留中的應用特別廣泛,包括豬肉中的磺胺類、血漿中克侖特羅、血清中二惡英等。生物樣本中愛比菌素應用免疫親和層析的回收率也可達到80%～86%。
  免疫親和層析技術原理
  IAC也是色譜技術的一種,可稱為免疫色譜技術,是一種利用抗原抗體特異性可逆結合特性的SPE技術,根據抗原抗體的高選擇性,從復雜的待測樣品中提取目標化合物。主要原理是將抗體與惰性微珠共價結合,然后裝柱,將抗原溶液過免疫親和柱,而非目標化合物則沿柱流下,后用洗脫緩沖液洗脫抗原,從而得到純化的抗原,用適當的緩沖液和合適的保存方法,柱可以再生備用。其提純效率很高,通常只需一次就可達到1000～10000倍的純化效果。